Piattaforma di Imaging e Microscopia NICO
La rapida evoluzione delle tecnologie di microscopia, insieme alla crescente complessità della preparazione dei campioni e dell’analisi dei dati, rende essenziale la centralizzazione delle competenze e delle strumentazioni in un’unica risorsa accessibile. La Piattaforma di Imaging e Microscopia è stata istituita proprio per rispondere a queste esigenze, offrendo alla comunità scientifica un centro altamente specializzato con tecnologie avanzate per applicazioni morfologiche, funzionali, quantitative e tridimensionali.
La facility ospita sistemi all’avanguardia che includono microscopia elettronica a scansione e a trasmissione, confocale ad alta risoluzione, microscopia due-fotoni, microscopia a foglietto di luce e widefield, oltre a piattaforme per lo slide scanning digitale e la ricostruzione morfometrica avanzata. L’integrazione di queste modalità complementari permette ai ricercatori di affrontare un’ampia gamma di esigenze sperimentali — dall’ultrastruttura subcellulare all’imaging 3D di organi interi.
Inoltre, la piattaforma mette a disposizione postazioni di lavoro dedicate all’elaborazione dei dati, alla ricostruzione 3D, all’analisi statistica e alla morfometria quantitativa, supportate da software specializzati per le neuroscienze, la biologia cellulare e gli studi anatomici. Sistemi di live-cell imaging in tempo reale, strumenti di microscopia quantitativa e piattaforme ad alta produttività ampliano ulteriormente le capacità della facility, creando un ambiente completo per la ricerca multidisciplinare e la formazione tecnica avanzata.
Strumenti
Microscopio Elettronico a Scansione (SEM)
Zeiss Gemini 460
- Modulo STEM
- Rivelatore Volume BSE ad alta risoluzione
- Sistema Zeiss “Volutome” per il taglio seriale automatico e l’imaging, con compensatore CC focale
Microscopio 2 fotoni
Nikon High-speed multiphoton confocal microscope A1RMP
Stage motorizzato (Scientifica) con adattatori per in vivo, ex-vivo e in vitro imaging
Sistema di scansione: galvano scanner e resonant scanner per acquisizione ad alta velocità
Femtosecond pulsed IR-laser (Ti:Sapphire laser system; Coherent) tunabile da 700 nm a 1080 nm.
Objectives: CFI60 Planfluor 10x A.N.0,3 d.l. 16 mm; CFI75 LWD 16xW NIR A.N.0,80 d.l. 3,0 mm; CFI75 LWD Apo 25xW A.N. 1.1 d.l. 2,0 mm; CFI60 Apo 40xW NIR A.N.0,80 d.l. 3,5 mm
Detector 4 Ch GaAsP NDD detector ad alta sensibilità
Microscopio a foglietto di luce (Light Sheet)
Andor Zyla 5.5 sCMOS Camera
Infinity Corrected Optics Setup
Obiettivi: 4X and 12X (organic solvent dipping objective lens)
Laser: 488-85, 561-100, 639-70
Workstation per la gestione e l’analisi delle immagini 3D, condotta con software IMARIS
Sistema Zeiss Axioscan Z.1
Illuminatore Colibri 7, R[G/Y]CBV-UV
Camera Sets Hitachi HV-F203 and Orca Flash 4.0 V3
Obiettivi: “Fluar” 5x/0.25 M27, “Plan-Apochromat” 10x/0.45 M27, “Plan-Apochromat” 20x/0.8 M27, “Plan-Apochromat” 40x/0.95 M27
Filtri: 56/90/91/92 HE LED, filter set 108 HE LED, 38 HE eGFP senza shift, 43 HE Cy3 senza shift, 96 HE
25 Vassoi x4 vetrini 26x76mm; 5 Vassoi x2 vetrini 52x76mm; 1 Vassoio x1 vetrino 102x76mm
Computer: Processor Intel Xeon Gold 6134 (hp Z6) Workstation Premium Zeiss 60A; n. 6 Memories 32 GB (1×32) DDR4-2666 (hp Z6); Graphic card NVIDIA Quadro P4000 8GB; hardware Zen 2.6 slidescan
Workstation: High End ZEISS 55A R2; Zen 2.6 desk Hardware; n. 4 Memories 32GB (2×16)
DDR4-2133 (Z840); Scheda video NVIDIA Quadro M6000 24GB D
Neurolucida 1
Microscopio Nikon Eclipse E600
Stage motorizzato
Microfire Camera 2-Megapixel Color Imaging (1600×1200)
Obiettivi: 2X-4X-10X-20X-40X-100X
Filtri: DAPI, Green (Cy2, Alexa488), Red (Cy3)
Imaging Software:
Neurolucida and Neurolucida Explorer (11.03 ver.)
Stereoinvestigator (11.03 ver.)
Neurolucida 2
Microscope Nikon Eclipse 80i
Color digital camera 3/4″ CCD chip, 1.92 MP, 1600H x 1200V pixel
Stage motorizzato
Microfire Camera 2-Megapixel Color Imaging (1600×1200)
Obiettivi: 4X-10X-20X-40X-60X-100Xoil
Filtri: DAPI, Green (Cy2, Alexa488), Red (Cy3), dark red
Imaging Software: Neurolucida and Neurolucida Explorer
Microscopio Elettronico a Trasmissione (TEM)
JEOL JEM-1010
EOL JEM-1010
Sorgente di elettroni: Filimanto di tugsteno
Voltaggio 40kv-100kv
Ingrandimento 600x to 500,000x
Utenza
- gruppi di ricerca NICO
- Dipartimenti e Centri Interdipartimentali dell’Università di Torino
- soggetti pubblici e privati con cui gli afferenti dei Dipartimenti dell’Università di Torino hanno in atto collaborazioni che prevedono l’utilizzo di analisi di imaging
- soggetti pubblici e privati esterni all’Università di Torino
Modalità di erogazione del servizio, tempi e sistemi di accesso
L’utilizzo della strumentazione è subordinato a una prenotazione da effettuarsi online dopo essersi accreditati come utenti interni o esterni al primo accesso.
La piattaforma è prenotabile attraverso il software di gestione BookMyLab recentemente acquistato dal Dipartimento di Neuroscienze.
Per gli utenti esterni le prenotazioni vengono effettuate da un amministratore.
Tutti gli utenti devono segnalare l’impossibilità di usare lo strumento almeno 24 ore prima del proprio turno. Altrimenti, con l’unica eccezione di eventi imprevedibili, il costo orario è comunque addebitato all’utente.
Comitato di gestione: Silvia De Marchis, Marina Boido, Annalisa Buffo
Costi del servizio
I costi di utilizzo sono calcolati con scadenza annuale al fine di monitorare l’uso delle strumentazioni. Gli addebiti agli utenti afferenti ai dipartimenti di UniTo avvengono mediante trasferimento interno di fondi a fronte dell’emissione di note di debito, mediante fatturazione per gli utenti esterni all’Università di Torino.
Tariffario
Ai costi indicati è da aggiungere l’IVA
Gli utenti inesperti interni ed esterni vengono formati all’utilizzo degli strumenti dai referenti dedicati.
E-mail referenti per gli strumenti:
E Boda enrica.boda@unito.it
M Boido marina.boido@unito.it
V Cerrato valentina.cerrato@unito.it
R Parolisi roberta.parolisi@unito.it
F Di Cunto ferdinando.dicunto@unito.it